Растворитель 646 и 647, в чем разница — ООО ДХЗ

Выбирая растворитель, очень сложно определиться с конкретным видом, поскольку на сегодняшний день в продаже существует огромная разновидность данного материала: растворитель 648, 645, 646, 647 и другие. Для правильно выбора типа растворителя необходимо знать его основные свойства и воздействия на конкретный материал. Наиболее популярными считаются растворители двух марок – 646 и 647, поэтому разберемся с их главными отличиями.

Растворитель 647, как и уксусная кислота пищевая, можно купить в любом специализированном магазине в любых количествах, и является он одним из наиболее востребованных, хотя не сильно превосходит растворитель 646. Покупают данные растворители не только предприятия, функционирование которых без данного вещества невозможно, но и обычные потребители, для выполнения ремонтных работ. Выпускаются они как в небольших емкостях по 0,5 л, так и в объемных бочках для широкого применения.

Растворители 646 и 647 активно выпускаются отечественными предприятиями и обладают хорошим качеством и растворяющими свойствами.

Главное их отличие – это химический состав. Растворитель 646 представляет собой смесь этанола, ацетона, бутанола, этилцеллозольва и тоулола, а 647 – смесь тоулола, бутилацетата, бутанола и этилацетат. Да, данные вещества очень близки по своему составу, но растворитель 647 не содержит ацетона, а это делает его менее агрессивным и более подходящим для поверхностей, которые требует бережного отношения. Работая с растворителем 646 необходимо соблюдать максимальную аккуратность и внимательность, так как с легкостью можно нанести повреждения слою краски. Причиной этого является тот факт, что данный растворитель относится к типу высокоактивных. В большинстве случаев его используют для разбавления нитроэмалей, нитролаков, а также эпоксидных глифталевых материалов. Также он придает блеск для лакокрасочных покрытий после высыхания поверхности. Что касается растворителя 647, то его предназначение несколько другое.

Его используют для разбавления лакокрасочных и нитроцеллюлозных материалов, тем самым обеспечивая им нужную вязкость. С его помощью можно качественно сгладить на поверхности различные штрихи и эмали. Во всем остальном, то есть в транспортировке, хранении и мерах предосторожности о как и уксусная кислота, купить оптом которую можно в любом магазине.

Другие статьи

Видео: Ацетон опасен как растворитель для красок Ацетон опасен как растворитель для краски. 

Чем опасен для человека растворитель 646? Растворитель 646 представляет собой сложную многокомпонентну..

08 июля 2015

Уксусная кислота применение в пищевой и химической промышленности. Такое вещество как уксусная кислота применяется для получен..

Растворитель для краски 646 и 647 – технические характеристики разбавителей 646

Многокомпонентные растворители имеют в своем составе как скрытые компоненты и разбавители, так и главный активный компоненты причем содержание первых, в некоторых случаях может достигать 50%. Использование скрытых растворителей (к примеру спиртов), а также разбавителей снижает общую стоимость растворителя и позволяет использовать как пленкообразующую смесь 2-3 типов полимеров различной природы.

Именно наличие нескольких компонентов растворителей 646 и 647 способствовало получению таких высоких технических характеристик. Эти типы растворителей считаются наиболее популярными, а их область применения с каждым годом стает все больше и больше.

Растворитель 646 технические характеристики, состав, применение.

Растворитель 646 по ГОСТу представляет собой бесцветную или желтоватую жидкость, которая обладает специфическим запахом. Применяют его как в быту, так и в промышленности для обезжиривания и разбавления красок. При помощи растворителя 646 можно довести ЛКМ до требуемой вязкости. Также им хорошо убирать пятна органического происхождения и промывать различные малярные инструменты.

Растворитель 646 очень универсален и эффективен, благодаря своему химическому составу. Это многокомпонентный растворитель, поэтому в его составе присутствует несколько более простых растворителей: 15% этанола, 10% бутанола, 50% толуола, 7% ацетона, 10% бутилацетата и 8% этилцеллозольва.

Хорошую репутацию и огромный спрос, данная марка растворителя заслужила благодаря следующим особенностям:

• Очень широка область применения. Он отлично подходит для разбавления лаков, грунтовок, шпатлевок и эмалей. Его используют в ходе реализации ремонтно-строительных работ зданий и помещений различного назначения, в процессе покраски автомобилей, обезжиривания поверхностей, очистки инструментов.

• Доступность. Его можно с легкостью купить в каждом магазине строительных материалов.

• Легкость в использовании. Не нужно обладать специальными знаниями чтобы использовать растворитель 646. Его сложный состав снижает риск возникновения химических ожогов и жирных следов до минимума.

• Приемлемая цена. Следует знать, что, используя растворитель р 646, технические характеристики его более чем отличные для такой низкой цены.

Как и любое химическое вещество, он имеет и некоторые недостатки: резкий и специфический запах, токсичен, легко воспламеняем.

Растворитель 646 – это соединение нескольких летучих органических веществ, которое обладает следующими физико-химическим свойствами:

• Температура вспышки — 7 °С;

• Температура самовозгорания +4037 °С;

• Температура кипения +59 °С;

• Плотность – 0,87 г/см3;

• Он не набирает вязкости и не замерзает.

Кроме этого, лишним не будет заглянуть в паспорт данного вещества, хотя большая часть цифр ничего не скажут обычному человеку, но технолог производства может запретить и дать рекомендации по использованию на основании данных параметров.

Растворитель марки р6 имеет следующие показатели:

• Кислотное число — 0,06 мг КОН/г;

• Массовая доля – 0,09%;

• Летучесть (по этиловому эфиру) – 12;

• Растворяющее действие – не оставляет белесоватых и матовых пятен;

• Число коагуляции 40 г/о;

• Удельный вес – 0,68 кг/л.

 

Используется растворитель для производства и работ с различными ЛКМ, в том числе и с нитроцеллюлозной группой красок. Р-646 нужен либо для разбавления перед применением, либо в процессе производства. Кроме нитроцеллюлозной группы красок он также используется для разбавления акриловых и меланиноамидных лакокрасочных материалов.

В ходе работ с использованием растворителя 646, обязательно нужно использовать респиратор и надевать резиновые перчатки. Также очень важным моментом является хорошая вентиляция. Не лишними будут специальные защитные очки, поскольку испарение растворителя воздействует не только на дыхательную систему, но и на глаза.

Общее сведения о растворителе 647.

Растворитель 647, также, как и 646, считается одним из самых востребованных. Он производится множеством химических предприятий и отлично известен потребителям. Потребительские свойства высокого уровня обусловили популярность и широту использования данного растворителя.

В состав растворителя 647 входит смесь органических летучих веществ: кетонов, ароматических углеводородов, эфиров и спиртов. Что касается химического состава, и процентного соотношения различных веществ, то 647 растворитель очень похож на 646. В его составе имеет 41,3% толуола, 29,8% бутилацетата, 21,2% этилацетата, 7,7% бутанола. Также он имеет в своем составе такие компоненты как этилцеллозольв и ацетон, и считается более агрессивным веществом чем растворитель 646. Поэтому применение растворителя 646 целесообразно там, где очень важно бережное отношение к обрабатываемой поверхности.

Используется данный тип растворителя для удаления лакокрасочных покрытий и лаков, а также для растворения пленкообразователей на нитроцеллюлозной основе.

Его очень часто используют как растворитель для кузовных работ, так как он пригоден для эффективного разбавления нитролаков и нитроэмалей, используемых в ходе покраски автомобиля.

Если вы выбираете растворитель 647, технические характеристики нужно знать обязательно. Рассмотрим самые главные из них. Что касается внешнего вида, то это слегка желтоватая или вовсе бесцветная жидкость без расслаивания, мути и взвешенных частиц. Его массовая доля воды (по Фишеру) составляет 0,6%, летучесть от 8 до 12, число коагуляции 60, а кислотное число 0,06 мг КОН/г.

Другие статьи

Электропроводность уксусной кислоты с дистиллированной водой. К наиболее важным показателям, характеризирующим электрическ..

24 мая 2016

Правила безопасности при работе с растворителями: Часть 1 Основные правила безопасности при использовании такого вещес. .

Какие растворители чаще всего используются в промышленности? Эти продукты являются однокомпонентными или составными систе..

Henry 647 Plumpro Fast-Track, Roll-Apply Vinyl Adhesip

Pellient

Продукты

Ardex

Быстрое, бросок винилового настира

  • . -Тауч всего за минуты

Изображения и видео

  • Информация
  • Технические данные
  • Загрузки
  • 0011 Объекты BIM
  • Калькулятор

Информация HENRY

® 647 PlumPro™

Не содержащий растворителей клей на основе акрилового полимера, разработанный для быстрой укладки как в коммерческих, так и в жилых помещениях. При нанесении валиком этот клей становится сухим на ощупь (готов к укладке напольного покрытия) уже через 10 минут.

Поставляется в контейнерах на 1 и 4 галлона.

Основные характеристики

  • Идеально подходит для сверхбыстрой укладки LVT как в коммерческих, так и в жилых помещениях, полный список всех рекомендуемых типов виниловых напольных покрытий см. в разделе «Использование»
  • Относительная влажность 99%, влагостойкость*
  • Сухой на ощупь (готовый к укладке напольного покрытия) всего за несколько минут
  • Наносится валиком из положения стоя
  • При необходимости напольное покрытие можно укладывать на срок до 8 часов
  • Немедленно заезжайте на новый этаж
  • Отличное покрытие 1200–1600 кв. футов на 4 галлона. ведро
  • Избавьтесь от телеграфирования/проявления гребня клеевого шпателя

Стандарты

Greenline
SystemOne™
FloorScore ®
HENRY’S Best 10-Year

Технические характеристики HENRY

® 647 PlumPro™

Применение для:

Когда специальные инструкции по укладке напольного покрытия допускают полное сцепление с поверхностью, сухую на ощупь

  • VCT (виниловая композитная плитка)
  • VET (виниловая плитка)
  • Виниловый лист, инкапсулированный стекловолокном (с подушкой)

    • Если специальные инструкции по укладке от производителя напольного покрытия допускают нанесение валиком или распылением самоклеящегося клея для постоянной укладки, сверните HENRY 647 для укладки следующих типов листов напольное покрытие:

    • Гомогенный виниловый лист
    • Гетерогенный виниловый лист
    • Виниловый лист на войлочной основе

    Все основания, все рекомендуемые типы напольных покрытий:

    Валик с ворсом 3/8 дюйма
    300–400 кв. футов на 1 галлон. (1 200–1 600 кв. футов на ведро 4 галлона)
    27,8–37,1 кв. м на 3,78 л (111,4–148,6 кв. м на ведро 15,14 л)

    Срок годности 1 год, если не открывать.
    ЛОС: 0 г/л, SCAQMD 1168; 0,0% CARB

    Для получения полной технической информации о продукте щелкните вкладку «Загрузки» и откройте загрузку «Технические данные».

    Загрузки HENRY

    ® 647 PlumPro™

    Объекты BIM HENRY

    ® 647 PlumPro™

    Калькулятор HENRY

    ® 647 PlumPro™

    Информация HENRY

    ® 647 PlumPro™

    Не содержащий растворителей клей на основе акрилового полимера, разработанный для быстрой укладки как в коммерческих, так и в жилых помещениях. При нанесении валиком этот клей становится сухим на ощупь (готов к укладке напольного покрытия) уже через 10 минут.

    Поставляется в контейнерах на 1 и 4 галлона.

    Основные характеристики

    • Идеально подходит для сверхбыстрой укладки LVT как в коммерческих, так и в жилых помещениях, полный список всех рекомендуемых типов виниловых напольных покрытий см. в разделе «Использование»
    • Относительная влажность 99%, влагостойкость*
    • Сухой на ощупь (готовый к укладке напольного покрытия) всего за несколько минут
    • Наносится валиком из положения стоя
    • При необходимости напольное покрытие можно укладывать на срок до 8 часов
    • Немедленно заезжайте на новый этаж
    • Отличное покрытие 1200–1600 кв. футов на 4 галлона. ведро
    • Избавьтесь от телеграфирования/проявления гребня клеевого шпателя

    Стандарты

    Greenline
    SystemOne™
    FloorScore ®
    HENRY’S Best 10-Year

    Технические характеристики HENRY

    ® 647 PlumPro™

    Применение для:

    Когда специальные инструкции по укладке напольного покрытия допускают полное сцепление с поверхностью, сухую на ощупь

  • VCT (виниловая композитная плитка)
  • VET (виниловая плитка)
  • Виниловый лист, инкапсулированный стекловолокном (с подушкой)

    • Если специальные инструкции по укладке от производителя напольного покрытия допускают нанесение валиком или распылением самоклеящегося клея для постоянной укладки, сверните HENRY 647 для укладки следующих типов листов напольное покрытие:

    • Гомогенный виниловый лист
    • Гетерогенный виниловый лист
    • Виниловый лист на войлочной основе

    Все основания, все рекомендуемые типы напольных покрытий:

    Валик с ворсом 3/8 дюйма
    300–400 кв. футов на 1 галлон. (1 200–1 600 кв. футов на ведро 4 галлона)
    27,8–37,1 кв. м на 3,78 л (111,4–148,6 кв. м на ведро 15,14 л)

    Срок годности 1 год, если не открывать.
    ЛОС: 0 г/л, SCAQMD 1168; 0,0% CARB

    Для получения полной технической информации о продукте щелкните вкладку «Загрузки» и откройте загрузку «Технические данные».

    Загрузки HENRY

    ® 647 PlumPro™

    Объекты BIM HENRY

    ® 647 PlumPro™

    Калькулятор HENRY

    ® 647 PlumPro™

    Молекулярная и спектроскопическая характеристика зеленых и красных цианиновых флуорофоров Alexa Fluor и серии AF

    1. Корман В. М., Ландт О., Кайзер М., Моленкамп Р., Мейер А. ., Чу Д.К.В., Блейкер Т., Брюнинк С., Шнайдер Дж., Шмидт М.Л., Малдерс Д.Г.Дж.К., Хаагманс Б.Л., ван дер Веер Б., ван ден Бринк С., Вийсман Л., Годерски Г., Рометт Дж.- Л., Эллис Дж., Замбон М., Пейрис М., Гуссенс Х., Реускен К., Купманс М. П. Г., Дростен К., Euro Surveill. 2020, 25.

    [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    2. M. Sauer, J. Hofkens, J. Enderlein, in Handbook of Fluorescence Spectroscopy and Imaging 2011 , 1–30.

    3. Hell SW, Science 2007, 316, 1153 LP–1158. [PubMed] [Google Scholar]

    4. Hell S. W., Nat. Методы 2009, 6, 24–32. [PubMed] [Google Scholar]

    5. Hell S.W., Sahl S.J., Bates M., Zhuang X., Heintzmann R., Booth M.J., Bewersdorf J., Shtengel G., Hess H., Tinnefeld P., Honigmann A. ., Якобс С., Теста И., Когнет Л., Лоунис Б., Эверс Х., Дэвис С.Дж., Эггелинг К., Кленерман Д., Уиллиг К.И., Висидомини Г., Кастелло М., Диаспро А., Кордес Т. ., J. Phys. Д 2015, 48, 443001. [Google Scholar]

    6. Hell S.W., Wichmann J., Opt. лат. 1994, 19, 780–782. [PubMed] [Google Scholar]

    7. Betzig E., Patterson G.H., Sougrat R., Lindwasser O.W., Olenych S., Bonifacino J.S., Davidson M.W., Lippincott-Schwartz J., Hess H.F., Science 2006, 313, 1642 –1645. [PubMed] [Google Scholar]

    8. Heilemann M., van de Linde S., Schüttpelz M., Kasper R., Seefeldt B., Mukherjee A., Tinnefeld P., Sauer M., Angew. хим. Междунар. Эд. 2008, 47, 6172–6176; [PubMed] [Google Scholar] Энджью. хим. 2008, 120, 6266–6271. [Академия Google]

    9. Ха Т., Тиннефельд П., Анну. Преподобный физ. хим. 2012, 63, 595–617. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    10. T. Cordes, J. Vogelsang, C. Steinhauer, I. H. Stein, C. Forthmann, A. Gietl, J. J. Schmied, G. П. Акуна, С. Лориен, Б. Лалкенс, П. Тиннефельд, в Оптическая наноскопия дальнего поля. Серия Springer по флуоресценции (методы и приложения) 2015 . 215–242.

    11. Liphardt B., Liphardt B., Lüttke W., Opt. коммун. 1981, 38, 207–210. [Академия Google]

    12. Альтман Р. Б., Терри Д. С., Чжоу З., Чжэн К., Геггер П., Колстер Р. А., Чжао Ю., Джавич Дж. А., Уоррен Дж. Д., Бланшар С. С., Nat. Методы 2011, 9, 68–71. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    13. Altman R. B., Zheng Q., Zhou Z., Terry D.S., Warren J.D., Blanchard S.C., Nat. Методы 2012, 9, 428–429. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    14. Tinnefeld P., Cordes T., Nat. Методы 2012, 9, 426–427. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    15. van der Velde J.H.M., Ploetz E., Hiermaier M., Oelerich J., de Vries J.W., Roelfes G., Cordes T., ChemPhysChem 2013, 14, 4084–4093. [PubMed] [Google Scholar]

    16. Ван дер Вельде Дж. Х. М., Олерих Дж., Хуанг Дж., Смит Дж. Х., Аминиан Джази А., Галиани С., Колмаков К., Гуридис Г., Эггелинг К., Херрманн А. ., Roelfes G., Cordes T., Nat. коммун. 2016, 7, 10144. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    17. Уно С.-Н., Камия М., Йошихара Т., Сугавара К., Окабе К., Тархан М. К., Фудзита Х. ., Funatsu T., Okada Y., Tobita S., Urano Y., Nat. хим. 2014, 6, 681–689. [PubMed] [Google Scholar]

    18. Джази А. А., Плётц Э., Аризки М., Дхандаютхапани Б., Вацлавска И., Кремер Р., Циглер К., Кордес Т., Биохимия 2017, 56, 2031–2041 . [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    19. Brox D., Kiel A., Wörner S.J., Pernpointner M., Comba P., Martin B., Herten D.-P., PLoS One 2013, 8, e58049. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    20. Dave R., Terry D.S., Munro J.B., Blanchard S.C., Biophys. Дж. 2009, 96, 2371–2381. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    21. Rasnik I., McKinney S.A., Ha T., Nat. Методы 2006, 3, 891–893. [PubMed] [Google Scholar]

    22. Vogelsang J., Kasper R., Steinhauer C., Person B., Heilemann M., Sauer M., Tinnefeld P., Angew. хим. Междунар. Эд. 2008, 47, 5465–5469; [PubMed] [Google Scholar] Энджью. хим. 2008, 120, 5545–5550. [Google Scholar]

    23. Cordes T., Vogelsang J., Tinnefeld P., J. Am. хим. соц. 2009, 131, 5018–5019. [PubMed] [Google Scholar]

    24. Лемке Э. А., Гамбин Ю., Ванделиндер В., Брустад Э. М., Лю Х.-В., Шульц П. Г., Гройсман А., Дениз А. А., J. Am. хим. соц. 2009 г., 131, 13610–13612. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    25. Cordes T., Maiser A., ​​Steinhauer C., Schermelleh L., Tinnefeld P., Phys. хим. хим. физ. 2011, 13, 6699–6709. [PubMed] [Google Scholar]

    26. Aitken C.E., Marshall R.A., Puglisi J.D., Biophys. Дж. 2008, 94, 1826–1835. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    27. Dempsey G.T., Bates M., Kowtoniuk W.E., Liu D.R., Tsien R.Y., Zhuang X., J. Am. хим. соц. 2009, 131, 18192–18193. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    28. Cosa G., Focsaneanu K.-S., McLean J.R.N., McNamee J.P., Scaiano J.C., Photochem. Фотобиол. 2001, 73, 585. [PubMed] [Google Scholar]

    29. Kolbeck P.J., Vanderlinden W., Nicolaus T., Gebhardt C., Cordes T., Lipfert J., Nucleic Acids Res. 2021, 49. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    30. Thermo Fisher Scientific. в справочнике The Molecular Probes. Руководство по флуоресцентным зондам и технологиям мечения (под редакцией И. Джонсона, М. Т. З. Спенса) 2009 .

    31. Zipper H. , Brunner H., Bernhagen J., Vitzthum F., Nucleic Acids Res. 2004, 32. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    32. Эггелинг С., Рингеманн С., Медда Р., Шварцманн Г., Сандхофф К., Полякова С., Белов В. Н., Хайн Б. , фон Миддендорф К., Шёнле А., Хелл С.В., Nature 2009, 457, 1159–1162. [PubMed] [Google Scholar]

    33. Kottke T., van de Linde S., Sauer M., Kakorin S., Heilemann M., J. Phys. хим. лат. 2010, 1, 3156–3159. [Академия Google]

    34. Седерберг О., Гуллберг М., Ярвиус М., Риддерстроле К., Леуховиус К.-Дж., Ярвиус Дж., Вестер К., Хидбринг П., Бахрам Ф., Ларссон Л.-Г., Ландегрен У., Нац. Методы 2006, 3, 995–1000. [PubMed] [Google Scholar]

    35. Yang W., Gelles J., Musser S.M., Proc. Натл. акад. науч. США 2004, 101, 12887 LP–12892. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    36. Kim H., Robinson S.B., Csaky K.G., Pharm. Рез. 2009, 26, 329–337. [PubMed] [Google Scholar]

    37. Léveillé F., El gaamouch F., Gouix E., Lecocq M., Lobner D. , Nicole O., Buisson A., FASEB J. 2008, 22, 4258–4271 . [PubMed] [Академия Google]

    38. Lin J.-R., Fallahi-Sichani M., Sorger P.K., Nat. коммун. 2015, 6, 8390. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    39. Yarani R., Shiraishi T., Nielsen P.E., Sci. Rep. 2018, 8, 638. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    40. Esteban A., Popp M.W., Vyas V.K., Strijbis K., Ploegh H.L., Fink G.R., Proc. Нац. акад. науч. 2011, 108, 14270 LP–14275. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    41. Clayton A.H.A., Walker F., Orchard S.G., Henderson C., Fuchs D., Rothacker J., Nice E.C., Burgess A.W., J. Biol. хим. 2005, 280, 30392–30399. [PubMed] [Google Scholar]

    42. French A.P., Mills S., Swarup R., Bennett M.J., Pridmore T.P., Nat. протокол 2008, 3, 619–628. [PubMed] [Google Scholar]

    43. Wingren C., Borrebaeck C.A.K., Curr. мнение Биотехнолог. 2008, 19, 55–61. [PubMed] [Google Scholar]

    44. Kimura R.H., Levin A.M., Cochran F. V., Cochran J.R., Proteins Struct. Функц. биоинф. 2009, 77, 359–369. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    45. Ziemba B.P., Swisher G.H., Masson G., Burke J.E., Williams R.L., Falke J.J., Biochemistry 2016, 55, 6395–6405. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

    46. Ballard J.L., Peeva V.K., DeSilva C.J.S., Lynch J.L., Swanson N.R., Mol. Биотехнолог. 2007, 36, 175–183. [PubMed] [Google Scholar]

    47. Cauchon E., Falgueyret J.-P., Auger A., ​​Melnyk R.A., J. Biomol. Скрининг 2011, 16, 518–524. [PubMed] [Google Scholar]

    48. Хелленкамп Б., Шмид С., Дорошенко О., Опанасюк О., Кюхнемут Р., Резаи Адариани С., Амвросий Б., Азнаурян М., Барт А., Биркедал В. ., Боуэн М. Э., Чен Х., Кордес Т., Эйлерт Т., Фийен С., Гебхардт С., Гётц М., Гуридис Г., Граттон Э., Ха Т., Хао П., Ханке С. А., Хартманн А. ., Hendrix J., Hildebrandt L.L., Hirschfeld V., Hohlbein J., Hua B., Hübner C.G., Kallis E., Kapanidis A.N., Kim J.-Y., Krainer G., Lamb D.C., Lee N.K. , Lemke E.A. , Левеск Б., Левитус М., Макканн Дж. Дж., Нареди-Райнер Н., Неттелс Д., Нго Т., Цю Р., Робб Н. К., Рекер К., Санабрия Х., Шлиерф М., Шредер Т., Шулер Б., Зайдель Х., Штрайт Л., Турн Дж., Тиннефельд П., Тьяги С., Ванденберк Н., Вера А.М., Венингер К.Р., Вюнш Б., Янез-Ороско И.С., Михаэлис Дж., Зайдель К.А.М., Крэггс Т. Д., Хьюгель Т., Нац. Методы 2018, 15, 669–676. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    49. Vöpel T., Hengstenberg C.S., Peulen T.-O., Ajaj Y., Seidel C.A.M., Herrmann C., Klare J.P., Biochemistry 2014, 53, 4590 –4600. [PubMed] [Google Scholar]

    50. Peulen T.-O., Opanasyuk O., Seidel C.A.M., J. Phys. хим. Б 2017, 121, 8211–8241. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    51. Zander A., ​​Holzmeister P., Klose D., Tinnefeld P., Grohmann D., RNA Biol. 2014, 11, 45–56. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    52. Хусада Ф., Бунтра К., Тассис К., де Бур М., Романо М., Ребуффат С., Бейс К., Кордес Т., EMBO J. 2018, 37, e100056. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    53. де Бур М., Гуридис Г., Вьетров Р., Бегг С. Л., Шурман-Вольтерс Г. К., Хусада Ф., Элефтериадис Н., Пулман Б., Макдевитт К. А., Кордес Т., eLife 2019, 8, e44652. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    54. Feng Y., Zhang L., Wu S., Liu Z., Gao X., Zhang X., Liu M., Liu J., Huang X ., Ван В., Ангью. хим. Междунар. Эд. 2016, 55, 13990–13994; [PubMed] [Google Scholar] Энджью. хим. 2016, 128, 14196–14200. [Google Scholar]

    55. DeRocco V.C., Anderson T., Piehler J., Erie D.A., Weninger K., BioTechniques 2010, 49, 807–816. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    56. McCann J.J., Zheng L., Chiantia S., Bowen M.E., Structure 2011, 19, 810–820. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    57. Ma W., Whitley K.D., Chemla Y.R., Luthey-Schulten Z., Schulten K., eLife 2018, 7, e34186. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    58. Врлич М., Строп П. , Эрнст Дж. А., Саттон Р. Б., Чу С., Брунгер А. Т., Nat. Структура Мол. биол. 2010, 17, 325–331. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    59. Reinartz I., Sinner C., Nettels D., Stucki-Buchli B., Stockmar F., Panek P. T., Jacob C. R., Nienhaus G. U., Schuler B. , Schug A., J. Chem. физ. 2018, 148, 123321. [PubMed] [Google Scholar]

    60. Gust A., Zander A., ​​Gietl A., Holzmeister P., Schulz S., Lalkens B., Tinnefeld P., Grohmann D., Molecules 2014, 19, 15824–15865. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    61. Graen T., Hoefling M., Grubmüller H., J. Chem. Теория вычисл. 2014, 10, 5505–5512. [PubMed] [Google Scholar]

    62. Höfig H., Gabba M., Poblete S., Kempe D., Fitter J., Molecules 2014, 19. [Google Scholar]

    63. Dai Y., Seeger M. ., Венг Дж., Сонг С., Ван В., Тан Ю.-В., Sci. Rep. 2016, 6, 30282. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    64. Höfig H., Gabba M., Poblete S., Kempe D., Fitter J., Molecules 2014, 19, 19269–19291. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    65. Hughes L.D., Rawle R.J., Boxer S.G., PLoS One 2014, 9, e87649. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    66. Tian H., Sakmar T. P., Huber T., Methods Cell Biol. 2013, 117, 267–303. [PubMed] [Google Scholar]

    67. Rashid F., Raducanu V.-S., Zaher M.S., Tehseen M., Habuchi S., Hamdan S.M., Nat. коммун. 2019, 10, 2104. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    68. Schmidt A., Altincekic N., Gustmann H., Wachtveitl J., Hengesbach M., ACS Chem. биол. 2018, 13, 2472–2483. [PubMed] [Академия Google]

    69. Zanetti-Domingues L.C., Tynan C.J., Rolfe D.J., Clarke D.T., Martin-Fernandez M., PLoS One 2013, 8. [бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    70. Hanson J.A., Duderstadt K., Watkins L.P., Bhattacharyya S., Brokaw J., Chu J.W., Yang H., Proc. Натл. акад. науч. США 2007, 104, 18055–18060. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    71. Флюорозонды. https://fluorprobes. com/product/af-647-maleimide/ 2020.

    72. M. De Boer, G. Gouridis, S. Mcdevitt, F. Husada, N. Eleftheriadis, B. Poolman, C. A Макдевитт, Т. Кордес, 9 лет0017 2018 .

    73. Гуридис Г., Шуурман-Вольтерс Г.К., Плетц Э., Хусада Ф., Вьетров Р., де Бур М., Кордес Т., Пулман Б., Nat. Структура Мол. биол. 2015, 22, 57–64. [PubMed] [Google Scholar]

    74. Husada F., Gouridis G., Vietrov R., Schuurman-Wolters G.K., Ploetz E., de Boer M., Poolman B., Cordes T., Biochem. соц. Транс. 2015, 43. [Google Scholar]

    75. Гуридис Г., Хетцерт Б., Киоше-Беккер К., де Бур М., Хайнеманн Х., Нюренберг-Голуб Э., Кордес Т., Тампе Р., Селл Респ. 2019 г., 28, 723–734.e6. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    76. Капанидис А. Н., Ли Н. К., Лоуренс Т. А., Дуз С., Маргит Э., Вайс С., Proc. Натл. акад. науч. США 2004, 101, 8936–8941. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    77. Eggeling C., Fries J.R., Brand L., Günther R., Seidel C.A.M., Proc. Нац. акад. науч. 1998, 95, 1556 LP–1561. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    78. K. Rurack, Квантовый выход флуоресценции: методы определения и стандарты . В: Resch-Genger U . 2008 .

    79. Видерсшайн Г.Ю., Биохимия. М., 2011. С. 76, 1276. [Google Scholar]

    81. Йена бионауки. https://www.jenabioscience.com/probes-epigenetics/reactive-components/reactive-fluorescent-dyes/maleimides/apc-009-af647-maleimide 2020.

    82. J. R. Lakowicz, в Springer US, 2006 , 205–235.

    83. O’Connor D.V., Ware W.R., Andre J.C., J. Phys. хим. 1979, 83, 1333–1343. [Google Scholar]

    84. С.   С. Фогель, К. Талер, П.   С. Бланк, С.   В. Кошик, в FLIM микроскопия в биологии и медицине 2009 .

    85. Smith T.A., Ghiggino K.P., Methods Appl. флуоресц. 2015, 3, 22001. [Google Scholar]

    86. Castillo A.M., Patiny L., Wist J., J. Magn. Резон. 2011, 209, 123–130. [PubMed] [Google Scholar]

    87. Sharff A.J., Rodseth L.E., Spurlino J.C., Quiocho F.A., Biochemistry 1992, 31, 10657–10663. [PubMed] [Google Scholar]

    88. Абрахам М. Дж., Муртола Т., Шульц Р., Палл С., Смит Дж. К., Хесс Б., Линдал Э., SoftwareX 2015, 1–2, 19–25. [Google Scholar]

    89. Л. Шредингер. 2020 .

    90. Хорнак В., Абель Р., Окур А., Строкбайн Б., Ройтберг А., Симмерлинг К., Белки 2006, 65, 712–725. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    91. Jakalian A., Bush B.L., Jack D.B., Bayly C.I., J. Comput. хим. 2000, 21, 132–146. [Академия Google]

    92. Wang J., Wang W., Kollman P.A., Case D.A., J. Mol. Графическая модель. 2006, 25, 247–260. [PubMed] [Google Scholar]

    93. Wang J., Wolf R.M., Caldwell J.W., Kollman P.A., Case D.A., J. Comput. хим. 2004, 25, 1157–1174. [PubMed] [Google Scholar]

    94. Best RB, Hofmann H., Nettels D., Schuler B., Biophys. Дж. 2015, 108, 2721–2731. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    95. Jorgensen W.L., Chandrasekhar J., Madura J.D., Impey R.W., Klein M.L., J. Chem. физ. 1983, 79, 926–935. [Google Scholar]

    96. Berendsen H.J.C., Postma J.P.M., van Gunsteren W.F., DiNola A., Haak J.R., J. Chem. физ. 1984, 81, 3684–3690. [Google Scholar]

    97. Hess B., Bekker H., Berendsen H. J. C., Fraaije J. G. E. M., J. Comput. хим. 1997, 18, 1463–1472. [Google Scholar]

    98. Jones J.E., Chapman S., Proc. Р. Соц. Лондон сер. А 1924, 106, 441–462. [Google Scholar]

    99. Barker J. A., Watts R. O., Mol. физ. 1973, 26, 789–792. [Академия Google]

    100. Schröder G.F., Alexiev U., Grubmüller H., Biophys. Дж. 2005, 89, 3757–3770. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    101. Corry B., Jayatilaka D., Biophys. Дж. 2008, 95, 2711–2721. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

    102. Панчук-Волошина Н., Хаугланд Р. П., Бишоп-Стюарт Дж., Бхалгат М. К., Миллард П. Дж., Мао Ф., Леунг В.-Ю., Хаугланд Р. П. , J. Histochem. Цитохим. 1999, 47, 1179–1188. [PubMed] [Google Scholar]

    103. Blanchard S.C., Kim H.D., Gonzalez R.L., Puglisi J.D., Chu S., Proc. Натл. акад. науч. США 2004, 101, 12893–12898. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    104. Sanborn M.E., Connolly B.K., Gurunathan K., Levitus M., J. Phys. хим. Б 2007, 111, 11064–11074. [PubMed] [Google Scholar]

    105. Jena Bioscience. https://www.jenabioscience.com/probes-epigenetics/reactive-components/reactive-fluorescent-dyes/maleimides/apc-007-af555-maleimide 2020.

    106. Флюорозонды. https://fluorprobes.com/product/alexa-fluor-555-maleimide/ 2020.

    107. Thermo Fisher Scientific. https://www.thermofisher.com/de/de/home/brands/молекулярно-зонды/ключ-молекулярные-зонды-продукты/alexa-fluor/alexa-fluor-dyes-across-the-spectrum.html 2020.

    108. Thermo Fisher Scientific. https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/A20346#/A20346 2020.

    109. Thermo Fisher Scientific. https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/A20347#/A20347 2020.

    110. Mächtel R., Narducci A., Griffith D.A., Cordes T., Orelle C., Res. микробиол. 2019. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    111. Davidson A.L., Dassa E., Orelle C., Chen J., Microbiol. Мол. биол. 2008 г., 72, 317–64. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    112. Dassa E., Essays Biochem. 2011, 50, 19–42. [PubMed] [Google Scholar]

    113. Muschielok A., Andrecka J., Jawhari A., Brückner F., Cramer P., Michaelis J., Nat. Methods 2008, 5, 965. [PubMed] [Google Scholar]

    114. Kong X., Nir E., Hamadani K., Weiss S., J. Am. хим. соц. 2007, 129, 4643–4654. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    115. Hwang H., Kim H., Myong S., Proc. Нац. акад. науч. 2011, 108, 7414 LP–7418. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    116. Hwang H., Myong S., Chem. соц. 2014, 43, 1221–1229. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

    117. Ploetz E., Lerner E., Husada F., Roelfs M., Chung S., Hohlbein J.